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關(guān)于PCRmax實(shí)時(shí)熒光定量檢測儀的技術(shù)原理,以下有詳細說(shuō)明
更新時(shí)間:2021-05-19   點(diǎn)擊次數:917次
  PCRmax實(shí)時(shí)熒光定量檢測儀是為應對多元化、高復雜使用環(huán)境而開(kāi)發(fā)的一款便攜式熒光定量PCR儀。本品采用了16單管聯(lián)管模式的小容量設計,及可對應電池供電功能等,以換取小巧便攜的特點(diǎn)。同時(shí),采用定制版帕爾貼模塊、全新光路設計以及頂部掃描等。 

 

  技術(shù)原理:
  所謂PCR技術(shù),是指在PCR反應體系中加入熒光基因,利用熒光信號累積實(shí)時(shí)監測整個(gè)PCR進(jìn)程,最后通過(guò)標準曲線(xiàn)對未知模板進(jìn)行定量分析的方法。在技術(shù)的發(fā)展過(guò)程中,兩個(gè)重要的發(fā)現起著(zhù)關(guān)鍵的作用:1、在90年代早期,TaqDNA多聚酶的5′核酸外切酶活性的發(fā)現,它能降解特異性熒光記探針,因此使得間接的檢測PCR產(chǎn)物成為可能;2、此后熒光雙標記探針的運用使在一密閉的反應管中能實(shí)時(shí)地監測反應全過(guò)程。這兩個(gè)發(fā)現的結合以及相應的儀器和試劑的商品化發(fā)展導致PCR方法在研究工作中的運用。
 
  PCR反應過(guò)程中產(chǎn)生的DNA拷貝數是呈指數方式增加的,隨著(zhù)反應循環(huán)數的增加,最終PCR反應不再以指數方式生成模板,從而進(jìn)入平臺期。在傳統的PCR 中,常用凝膠電泳分離并用熒光染色來(lái)檢測PCR反應的最終擴增產(chǎn)物,因此用此終點(diǎn)法對PCR產(chǎn)物定量存在不可靠之處。在real-time Q-PCR中,對整個(gè)PCR反應擴增過(guò)程進(jìn)行了實(shí)時(shí)的監測和連續地分析擴增相關(guān)的熒光信號,隨著(zhù)反應時(shí)間的進(jìn)行,監測到的熒光信號的變化可以繪制成一條曲 線(xiàn)。在PCR反應早期,產(chǎn)生熒光的水平不能與背景明顯地區別,而后熒光的產(chǎn)生進(jìn)入指數期、線(xiàn)性期和最終的平臺期,因此可以在PCR反應處于指數期的某一點(diǎn) 上來(lái)檢測PCR產(chǎn)物的量,并且由此來(lái)推斷模板最初的含量。為了便于對所檢測樣本進(jìn)行比較,在real-time Q-PCR反應的指數期,首先需設定一定熒光信號的域值,一般這個(gè)域值是以PCR反應的前15個(gè)循環(huán)的熒光信號作為熒光本底信號,熒光域值的缺省設置是3~15個(gè)循環(huán)的熒光信號的標準偏差的10倍。如果檢測到熒光信號超過(guò)域值被認為是真正的信號,它可用于定義 樣本的域值循環(huán)數(Ct)。Ct值的含義是:每個(gè)反應管內的熒光信號達到設定的域值時(shí)所經(jīng)歷的循環(huán)數。研究表明,每個(gè)模板的Ct值與該模板的起始拷貝數的 對數存在線(xiàn)性關(guān)系,起始拷貝數越多,Ct值越小。利用已知起始拷貝數的標準品可作出標準曲線(xiàn),因此只要獲得未知樣品的Ct值,即可從標準曲線(xiàn)上計算出該樣 品的起始拷貝數。
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